Domaine : Sciences du vivant - Thématique(s) : Outils d’analyse de biomarqueurs
Stages courts
ATELIERS PRATIQUES D’INITIATION A LA BIOLOGIE MOLECULAIRE / EXTRACTION DE PLASMIDE et CLONAGE MOLECULAIRE
Stage pratique visant à s’initier aux techniques de clonage : analyse de plasmide, mise en confiance et acquisition d’une autonomie dans la conception et la réalisation d’une expérience de clonage moléculaire. Stage pouvant être associé à la « Formation Théorique en biologie moléculaire » pour élargir ses compétences dans le domaine du clonage.
Mise à jour : septembre 2025
PROGRAMME
- Purification et caractérisation d’un ADN plasmidique à partir d’une culture bactérienne.
- Electrophorèse sur gel d’agarose et visualisation de l’ADN.
Comparaison de deux tampons de migration. - Dosage d’ADN par spectrophotométrie et par électrophorèse en gel d’agarose.
- Hydrolyse par des enzymes de restriction.
Choix des enzymes et mise au point d’un protocole. - Conception du clonage in silico (logiciel gratuit)
- Clonage par ligation.
- Transformation de bactéries compétentes.
- Discrimination des clones positifs :
– par test « blanc-bleu »
– par PCR sur colonies
– par analyse du profil de restriction du plasmide recombiné. - Aperçu théorique sur l’ensemble des méthodes de clonage.
OBJECTIFS et COMPÉTENCES VISÉES
- Maitriser le clonage moléculaire en autonomie, de la conception à la réalisation
- Manipuler les outils de base utilisés en biologie moléculaire
- Utiliser des logiciels dédiés pour le clonage in silico (logiciels en accès libre)
- Préparer par PCR le fragment à cloner
- Produire des vecteurs recombinés par insertion du fragment dans un vecteur.
PUBLIC VISÉ ET PRÉ-REQUIS
Personnels de laboratoire souhaitant acquérir des compétences en manipulations de l’ADN.
-
- Biologistes ou scientifiques dans des domaines à l’interface avec la biologie
- Chercheurs, ingénieurs et techniciens
Pré-requis :
Des connaissances basiques sur les acides nucléiques est un plus, mais n’est pas un prérequis pour suivre la formation.
PROGRAMME
- Purification et caractérisation d’un ADN plasmidique à partir d’une culture bactérienne.
- Electrophorèse sur gel d’agarose et visualisation de l’ADN.
Comparaison de deux tampons de migration. - Dosage d’ADN par spectrophotométrie et par électrophorèse en gel d’agarose.
- Hydrolyse par des enzymes de restriction.
Choix des enzymes et mise au point d’un protocole. - Conception du clonage in silico (logiciel gratuit)
- Clonage par ligation.
- Transformation de bactéries compétentes.
- Discrimination des clones positifs :
– par test « blanc-bleu »
– par PCR sur colonies
– par analyse du profil de restriction du plasmide recombiné. - Aperçu théorique sur l’ensemble des méthodes de clonage.
Méthodes
-
- Cours théoriques et pratiques.
- Apprentissage par études d’exemples concrets.
- Supports pédagogiques, bibliographie et documentation, diaporamas.
Modalités d’évaluation
-
- Attestation de fin de formation et assiduité
LES + DE LA FORMATION
-
- Formation conçue en cohérence avec les besoins identifiés sur le marché du travail
- Méthode pédagogique orientée vers l’acquisition d’outils stratégiques et opérationnels efficaces, complets, pertinents et innovants
- Corps professoral composé d’enseignants-chercheurs et auteurs de renommée internationale
Pour candidater
Responsable(s)
pédagogique
Informations
Catégorie de l’action de développement des compétences :
(Article L6313-1 du Code du Travail)
Action de formation
Effectifs : Minimun : 8. Maxi : 14 personnes.
Évaluation et validation :
Attestation de fin de formation
Possibilité de sessions sur-mesure ou INTRA Entreprise : nous consulter : biosciences-fc@sorbonne-universite.fr
Dates : en JUIN 2026. Dates précises, nous consulter.
| Session |
du 04/06/2026
au 09/06/2026 |
|---|
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